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不同濃度的檸檬酸鈉對脫氮假單胞桿菌發酵過程的影響——材料與方法

來源:江西農業大學學報 發布時間:2024-11-13 16:58:55 瀏覽:392 次

1、材料與方法


1.1材料與儀器


1.1.1菌種脫氮假單胞桿菌(Pseudomonasdenitrificans),由本實驗室保存。


1.1.2藥品和儀器乙酰輔酶A、葡萄糖-6-磷酸脫氫酶、醛縮酶、磷酸丙糖異構酶、甘油醛-3-磷酸脫氫酶和L-乳酸脫氫酶均為Sigma產品,DNA酶、草酰乙酸、磷酸烯醇丙酮酸、ATP、ADP、NADP、NADH、NADPH均為進口分裝生化試劑,其他試劑均為國產分析純。


UV765型紫外-可見分光光度計;ZHWY-2112型大振幅恒溫雙層搖床;高效液相色譜儀SPD-20A(MODEL);雷磁pHS-3C pH計。


1.2培養基


1.2.1斜面培養基蔗糖30 g,蛋白胨10 g,玉米漿10 g,(NH4)2SO40.25 g,(NH4)2HPO41.5 g,MnSO4·H2O 0.1 g,ZnSO4·7H2O 0.1 g,瓊脂20 g,去離子水1 000 mL。滅菌前調pH至7.0~7.2。


1.2.2種子培養基蔗糖35 g,蛋白胨20 g,KH2PO45 g,(NH4)2SO42.0 g,(NH4)2HPO40.8 g,MgSO41.5 g,ZnSO4·7H2O 0.02 g,MnSO4·H2O 0.2 g,去離子水1 000 mL。滅菌前調pH至7.2~7.4。


1.2.3發酵培養基蔗糖50 g,蛋白胨25 g,(NH4)2SO41 g,ZnSO4·7H2O 0.08 g,MgSO42 g,KH2PO40.8 g,甜菜堿10 g,5,6-二甲基苯并咪唑(DMBI)0.08 g,CoCl2·6H2O 0.15 g,CaCO32 g,去離子水1 000 mL。滅菌前調pH至7.2~7.4。


1.3搖瓶發酵方法


種子液的制備:每支培養好的脫氮假單胞桿菌新鮮斜面(18 mm×180 mm)加入10 mL無菌水,刮洗制備成菌懸液。以無菌吸管吸取2 mL菌懸液至裝有種子培養基的三角瓶(裝量為50 mL/250 mL三角瓶)中,在搖床上進行種子液的培養,培養條件為:溫度30℃;轉速180 r/min;培養至OD700為9~10(周期大概24 h)。


搖瓶發酵:培養好的種子液按10%接種量接種到裝有發酵培養基的搖瓶(裝量為40 mL/250 mL三角瓶)中,在30℃的溫度和180 r/min的轉速下培養。


將檸檬酸鈉按照相應的濃度梯度(濃度梯度為0%、0.05%、0.1%、0.2%、0.3%、0.4%)添加到發酵培養基中,進行搖瓶發酵培養。


1.4酶液的制備


取5 mL發酵液于4℃,4 000 r/min離心20 min,沉淀用5 mL磷酸鹽緩沖液(PBS,pH 7.0)充分混勻后在上述相同條件下離心,棄上清繼續用PBS清洗再離心。上述處理后的沉淀中加入5 mL PBS,DNA酶(2.5 mg/mL)25μL,溶菌酶(25 mg/mL)300μL,充分混勻在30℃水浴振蕩30 min,于4℃8 000 r/min離心20 min,上清即為細胞裂解液。


1.5測定方法


1.5.1菌體生物量的測定

將取樣的發酵液進行適當的稀釋后,于700 nm處測定吸光值,用蒸餾水作為對照,試驗設3次重復。菌體的光密度(OD700)=OD讀數×稀釋倍數。


1.5.2維生素B12含量的測定

取30 mL充分搖勻的發酵液于4 000 r/min離心10 min,去上清后加30 mL蒸餾水攪勻在上述相同條件下離心,倒去上清液后加入10 mL蒸餾水將菌體攪勻,加入8%(質量比)亞硝酸鈉溶液和冰乙酸各3 mL,搖勻,于95~100℃水浴30 min;水浴后冷卻至室溫,加蒸餾水定容至50 mL,過濾。所得濾液適當稀釋后,在波長為361 nm處進行紫外光譜分析,根據所繪制的標準曲線算出維生素B12含量,試驗設3次重復。


1.5.3酶液中蛋白的測定酶液中蛋白的測定采用考馬斯亮藍法。


1.5.4酶活的測定

(1)葡萄糖激酶:采用6-磷酸葡萄糖脫氫酶偶聯比色法,1 mL反應體積中含有50 mmol/L Tris-HCl(pH 7.5),1 mmol/L ATP,0.5 mmol/L NADP,10 mmol/L MgCl2,10 mmol/L葡萄糖和0.7U葡萄糖-6-磷酸脫氫酶。


(2)丙酮酸激酶:1 mL反應體積中含有2 mmol/L磷酸烯醇式丙酮酸,5 mmol/L ADP,2 mmol/L果糖-1,6-二磷酸,0.15 mmol/L NADH,80 mmol/L KCl,10 mmol/L MgCl2和2.85 U L-乳酸脫氫酶。


(3)葡萄糖-6-磷酸脫氫酶:1 mL反應體積中含有2 mmol/L葡萄糖-6-磷酸,1 mmol/L NADP和10 mmol/L MgCl2。


(4)磷酸果糖激酶:采用酶偶聯法,1 mL反應體積中含有2 mmol/L果糖-6-磷酸,1 mmol/L ATP,0.3 mmol/L NADH,10 mmol/L MgCl2,1 U醛縮酶,3.5 U磷酸丙糖異構酶和1 U甘油醛-3-磷酸脫氫酶。


(5)檸檬酸合成酶:1 mL反應體積中含有1 mmol/L 2-硝基苯甲酸(DTNB),0.5 mmol/L乙酰輔酶A,10 mmol/L草酰乙酸和10 mmol/L MgCl2。


葡萄糖激酶和葡萄糖-6-磷酸脫氫酶的酶活測定時,1 mL反應體系和50μL細胞裂解液分別在30℃水浴鍋中預熱5 min,混合后立即連續測定340 nm處吸光值10 min,△A值=反應10 minA340值-反應0 minA340值,根據所繪制的NADPH標準曲線算出酶量。


丙酮酸激酶和磷酸果糖激酶的酶活測定時,1 mL反應體系和50μL細胞裂解液分別在30℃水浴鍋中預熱5 min,混合后立即連續測定340 nm處吸光值10 min,△A值=反應0 minA340值-反應10 minA340值,根據所繪制的NADH標準曲線算出酶量。


檸檬酸合成酶的酶活測定時,1 mL反應體系和50μL細胞裂解液分別在30℃水浴鍋中預熱5 min,混合后立即連續測定412 nm處吸光值10 min,△A值=反應10 minA340值-反應0 minA340值,根據公式A=εbc算出酶量,摩爾吸光系數ε=1 485 L/(mol·cm)。


一個酶活力單位(U)定義為在30℃下,1分鐘催化1μmol的底物反應所需的酶量。根據各樣品的蛋白質含量,計算出酶的比活力(比活力代表的是添加檸檬酸鈉與不添加檸檬酸鈉對照酶活下的比值)。


1.5.5有機酸的測定采用HPLC法,色譜條件:色譜柱Hi-Plex H(8μm,300 mm×7.8 mm),流動相0.01 M H2SO4,流速0.4 mL/min,樣品量10μL,溫度50℃,檢測器UV 210 nm。標準品為檸檬酸、延胡索酸、乙酸、丙酮酸、蘋果酸、琥珀酸、草酰乙酸、α-酮戊二酸和丙酸。


不同濃度的檸檬酸鈉對脫氮假單胞桿菌發酵過程的影響——摘要、結論與討論

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